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流失樣本制備Ⅲ:續(xù)集來了!小鼠肺組織單細(xì)胞懸液制備及流式分析

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往期回顧
REVIEW

Ⅰ:跟著步驟走,小鼠脾臟組織單細(xì)胞懸液制備so easy!

Ⅱ:一學(xué)就會(huì)!小鼠淋巴結(jié)&胸腺單細(xì)胞懸液制備全流程


   

    肺部是機(jī)體與外界環(huán)境接觸最為頻繁的器官之一,每一次呼吸都可能遭遇病原體、過敏原和污染物等潛在威脅。為了應(yīng)對(duì)這些挑戰(zhàn),肺部建立了一個(gè)高密度的抗原呈遞細(xì)胞(APC)網(wǎng)絡(luò),其中包含專業(yè)的樹突狀細(xì)胞(DC)和特定的巨噬細(xì)胞子集。這些細(xì)胞宛如忠誠的哨兵,不僅承擔(dān)警戒職責(zé),更能夠?qū)η秩氲牟≡w及其他免疫威脅發(fā)起有效的免疫應(yīng)答。由此可見,肺部在機(jī)體免疫系統(tǒng)中具有舉足輕重的地位,是深入探索免疫功能與機(jī)制的重要窗口。

    在本篇推文中,我們將介紹一套制備小鼠肺組織單細(xì)胞懸液的詳細(xì)方法,并通過流式細(xì)胞術(shù)對(duì)肺部的樹突狀細(xì)胞和巨噬細(xì)胞進(jìn)行檢測和分析。



Phase.1 試劑和溶液準(zhǔn)備


1

脫氧核糖核酸酶 I(DNase I):

    使用無菌溶液和無菌操作,將脫氧核糖核酸酶I(DNAse I)溶解在PBS中,使終濃度為500 U/mL。

2

膠原酶IV(Collagenase IV):

    使用無菌溶液和無菌操作,將膠原酶IV溶解在PBS中,使其濃度達(dá)到10,000 U/mL。

3

胎牛血清(FCS):

在水浴中以37°C解凍FCS,一旦完全解凍,在56°C的水浴中孵育30 min。通過無菌0.45μm過濾器直接過濾溫?zé)岬腇CS,并制備等分試樣。將熱滅活FCS儲(chǔ)存在-20°C下,避免重復(fù)凍融循環(huán)。在整個(gè)過程中使用無菌操作。

4

流式緩沖液(FACS Buffer):

在500 mL PBS中加入2%的FCS(v/v)和22 mM EDTA。

5

消化液:

每只小鼠,在RPMI培養(yǎng)基中制備2 mL由200 U/mL膠原酶IV和0.5 U/mL DNAse I組成的消化液。

6

10×ACK裂解緩沖液:

將186.2gEDTA(乙二胺四乙酸二水二鈉鹽)溶解在800 mL水中,加入20 g氫氧化鈉微球。將pH調(diào)整到8,并將水添加到1000 mL。在室溫下保存,使用前記得將緩沖液稀釋至1倍濃度。

Phase.2 制備流程

小鼠肺組織單細(xì)胞懸液的逐步制備


1.處死小鼠,用爪子把動(dòng)物固定在墊子上。向動(dòng)物噴灑70%的乙醇;

2.切開腹部以上的皮膚,進(jìn)一步向下巴開放,暴露腹腔;

3.用一把鈍尖剪刀切開肋骨,打開腹腔;把肋骨拔掉;

4.對(duì)肺進(jìn)行解剖。右肺由四個(gè)葉組成,而左肺只有一個(gè)葉;

5.小心地切斷氣管,去除任何附著在肺上的脂肪;

6.將肺取入含有300 μl消化溶液的2 mL離心管中;

7.用剪刀把肺壓在管子里切成小塊;

8.加入700 μl的消化液;

9.樣品在800 rpm下,37℃孵育30 min;

10.從搖床上取出試管,再加1 mL消化液;快速渦旋樣品;

11.將樣品以800 rpm在37°C下孵育30 min;

12.從搖床上取出管子,放在冰上敷2 min;

13.加入40 μl 500 mM EDTA,冰下孵育2 min;

14.用1 mL FACS緩沖液在50 mL管上制備70 μm細(xì)胞過濾器;

15.將肺細(xì)胞懸液倒入細(xì)胞過濾器上;

16.加入9 mL的FACS緩沖液,從過濾器中清洗剩余的細(xì)胞;

17.380×g離心7 min;

18.將細(xì)胞重懸1×ACK裂解緩沖液中,室溫孵育2 min;

19.加入過量的FACS緩沖液,停止裂解;

20.380×g離心7 min;

21.在2 mL FACS緩沖液中重懸浮細(xì)胞。用70 μm的細(xì)胞過濾器細(xì)胞懸液,去除團(tuán)塊;

22.計(jì)數(shù),準(zhǔn)備制備染色樣本


Phase.3 流式分析


通過酶消化8周齡C57BL/6小鼠肺制備單細(xì)胞懸浮液,然后用一組15種表面標(biāo)記物染色。記錄3×106個(gè)事件,用于隨后鑒定肺髓系來源細(xì)胞。排除碎片和粘連體后,通過CD45的表達(dá)來鑒定免疫細(xì)胞。排除譜系陽性淋巴細(xì)胞(B220+、CD19+、Nk-1.1+、NKP46+、Ter-119+、TCR-β+)和死細(xì)胞(APC-Cy7中的DRAQ7+)。根據(jù)其表面標(biāo)記物表達(dá)模式,鑒定了小鼠肺中存在的所有髓系來源細(xì)胞。


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圖1流式圈門

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圖2流式分析的畫門策略


圈門邏輯:

A.細(xì)胞根據(jù)其大?。‵SC-A/SSC-A)進(jìn)行圈門,以排除碎片;

B.通過FSC-A/FSC-W和SSC-A/SSC-W排除粘連體,圈出單個(gè)細(xì)胞;

C.圈出CD45+總免疫細(xì)胞;

D.在CD45+門中,圈出Lin+DRAQ7-細(xì)胞群;

E.在Lin+DRAQ7-細(xì)胞群中,通過Ly6G+圈出中性粒細(xì)胞;

F.Ly6G-群體中,界定CD64+MerTK+的巨噬細(xì)胞,并在巨噬細(xì)胞中通過CD11b和SigleF鑒定肺泡巨噬細(xì)胞和間質(zhì)巨噬細(xì)胞;

G.在CD64-MerTK-群中,通過CD11c和MHC-II圈門

1.CD11c-MHC-II-門中,進(jìn)一步圈出CD11b+細(xì)胞群,在CD11b+圈中,SigleF+群體為嗜酸性粒細(xì)胞;

2.SigleF-群體中,再通過CD43-Ly6c+鑒定Ly6c高表達(dá)單核細(xì)胞,CD43+Ly6c-鑒定Ly6c低表達(dá)單核細(xì)胞;

3.CD11c+MHC-II+門中,圈出CD64-CD26+細(xì)胞群;

4.在此門下,通過CD172α+XCR1+鑒定cDC1;CD172α+XCR1-鑒定cDC2

5.cDC2可進(jìn)一步用過CD11b和CD301b區(qū)分為:CD301b+cDC2和CD301b-cDC2


參考文獻(xiàn):Probst, Hans Christian et al. “Guidelines for DC preparation and flow cytometry analysis of mouse nonlymphoid tissues.” European journal of immunology, 10.1002/eji.202249819. 13 Dec. 2022, doi:10.1002/eji.202249819


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